Coleta de esporos

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Dra. Carla Leite - Vídeos de Microbiologia

Dra. Carla Leite - Vídeos de Microbiologia

Күн бұрын

Пікірлер: 20
@carolforsan8794
@carolforsan8794 7 ай бұрын
Melhor explicação sobre coleta de esporos que já vi
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio 7 ай бұрын
Que amor! ❤️❤️
@rubens6032
@rubens6032 2 жыл бұрын
Que conteúdo maravilhoso Dra. 🥰
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio 2 жыл бұрын
Obrigada!!! 🥰🥰
@carbonpneus3800
@carbonpneus3800 2 жыл бұрын
Parabéns Dra, excelente vídeo. Diego Elmino.
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio 2 жыл бұрын
Obrigada!!
@abraaocoelho2835
@abraaocoelho2835 2 жыл бұрын
excelente
@Eduardoagronomianet
@Eduardoagronomianet Жыл бұрын
Dra, se eu quiser usar essa solução de esporos para inocular em uma placa para crescimento, ela dura quanto? preciso colocá-la em um recipiente especial, tipo âmbar para evitar a fotodegradação? A última pergunta, essa solução Twenn + NaCl pode interferir na sobrevivência dos esporos, mesmo eu diluindo bem essa solução de esporos obtida?
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio Жыл бұрын
Oi Eduardo! Eu costumo estabelecer como limite um tempo de 7 dias para uso em experimento. Isso para usar a suspensão fresca, não porque ela degrada ou interfere na sobrevivência. Eu não costumo utilizar recipiente âmbar e eu armazeno em geladeira. Após os 7 dias eu utilizo a suspensão apenas para obter novos micélios e coletar novos esporos. Mas essa é uma padronização minha. Para mais tempo de armazenamento seria bom fazer um teste de viabilidade.
@Eduardoagronomianet
@Eduardoagronomianet Жыл бұрын
@@dra.carlaleite-videosmicrobio Obrigado Dra, como sempre muito gentil.
@Eduardoagronomianet
@Eduardoagronomianet Жыл бұрын
Dra Carla, parabéns pelos vídeos, são todos excelentes. Gostaria de tirar uma dúvida: para corrigir o pH do meio de cultura BDA para multiplicação de fungos eu posso usar Ácido Fosfórico e Hidróxido de Potássio, existe algum impedimento?
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio Жыл бұрын
Obrigada Eduardo!!! Você pode corrigir o pH com Ácido fosfórico e Hidróxido de potássio, porém, você precisa considerar que estará adicionando ao meio de cultura os elementos fósforo e potássio, mesmo que em pequenas concentrações. Se você estiver fazendo um experimento, lembre-se que suas réplicas precisarão ser feitas da mesma forma, ou seja, o pH do meio de cultura precisará ser ajustado da mesma forma, e, na metodologia é interessante descrever esse processo. Espero ter ajudado!
@Eduardoagronomianet
@Eduardoagronomianet Жыл бұрын
@@dra.carlaleite-videosmicrobio Grato pela informação.
@amandajeniffer9299
@amandajeniffer9299 2 ай бұрын
Dra., pra filtrar os esporos, posso utilizar papel filtro no lugar da gaze?
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio 2 ай бұрын
Oi Amanda! Eu nunca fiz esse teste! Toda fez que eu utilizo o papel filtro de papel (Watman número 1) eu uso com a bomba a vácuo. Vale fazer o teste! Depois me conta o resultado! Bjos
@marcelocscatalao
@marcelocscatalao Жыл бұрын
Dra, posso inocular o fungo com os esporos diretos do cogumelo? ou devo colocar esporos em algum meio antes de inocular? obrigado
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio Жыл бұрын
Oi Marcelo! Para inocular os esporos de um cogumelo você precisa utilizar um swab estéril. Primeiro você passa o swab nas lamelas do cogumelo e coleta os esporos. Se possível, faça isso em uma cabine de segurança biológica, assim evita a contaminação do seu swab com demais esporos de fungos contaminantes do ar. Depois, ainda dentro da cabine de segurança biológica, ou próximo a um bico de Bunsen, passe esse swab por toda a placa de Petri contendo o meio de cultura adequado para o seu cogumelo crescer. Eu deixo como dica utilizar no meio de cultura a concentração de 15g/L de ágar. Dessa forma, o seu meio de cultura terá mais umidade, quando comparamos com meios sólidos contendo 20g/L de ágar. Mais umidade facilitará a germinação dos esporos. Espero ter ajudado!
@marcelocscatalao
@marcelocscatalao Жыл бұрын
@@dra.carlaleite-videosmicrobio o que fiz foi um SAB ( still air box ) tudi lavado com água e lixívia ( cloro) material todo esterilizado no forno a 130°C foi feito tudo dentro da box, laboratiro teve 30 min com luz UV dois meios de cultura, MEA e PDA, se está falhar vou fazer a 15g/l de agar, pois fiz a 20g/l, talvez coloque os esporos em água destilada 1h para depois binocular na placa.
@dra.carlaleite-videosmicrobio
@dra.carlaleite-videosmicrobio Жыл бұрын
Usa solução salina 0.85% de NaCl, isso irá manter o equilíbrio osmótico. Outro teste é preparar o mesmo meio de cultura, um sólido com 15 g/l de ágar e outro líquido e inocule os esporos. Mantém o meio de cultura líquido incubado sob agitação. 150 rpm. Pode ser que seus esporos necessitem de muita umidade e oxigenação para germinar.
@marcelocscatalao
@marcelocscatalao Жыл бұрын
@@dra.carlaleite-videosmicrobio penso que não exista essa necessidade, são fungos pioneiros que são muito menos exigentes, neste momento estão todos em placas de petri...vamos ver no que dá...
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