Preparación de Medios de Cultivo

[@christiancanchingre5976]

Saludos profesor muy buena enseñanza, muy buena técnica además así como estos videos deben de ser muchos para q nuestros alumnos mejoren y tengan la capacidad de lograr muy buenos resultados... Loable su labor a compartir sus conocimientos.. Saludos desde Ecuador 🇪🇨

[@danielwfranco]

iBuen video! Deberias hacer unos sobre Urocultivo, coprocultivo,hemocultivo, etc. En KZbin casi no se encuentran o son muy incompletos y no enseñan bien las técnicas o la correcta forma de REPORTAR los resultados.

[@blank7926]

que lindo video! es muy claro, yo que nunca he usado medios de cultivo pude darme una muy buena idea de los cuidados que hay que tener, muchas gracias.

[@nancymunoz4579]

Muchas gracias por su Excelente explicación profe, súper producción.👌

[@xochitlmunoz4735]

0:00 introducción 0:39 inicio de preparación 1:53 realización de cálculos 3:09 recipientes a utilizar 4:11 peso del medio de cultivo 5:26 disolver medio de cultivo 7:19 valor de pH 9:09 clasificación de medios de cultivo 9:49 clarificación 14:19 esterilización de medios 14:49 dispensar en su forma final 15:48 solidificación 17:05 casos particulares 20:06 conclusión y despedida

[@leonoratieslopez3233]

Magnifico vídeo

[@guadalupevivasdario4796]

Muy buena explicación. Muchas gracias por difundir sus conocimientos de manera clara y detallada. 🤩👍

[@adrianamollo799]

Excelente explicación!!!! Me encantó! Super detallado ,👏👏👏

[@jimmy_c3820]

Excelente felicitaciones bueno aporte saludos desde Ecuador.

[@aidehernandezvela7479]

Wow, excelente video, súper completo y la edición ni se diga, chulada.

[@bertinalpha8047]

Excelente. Podrías hacer un video sobre el usp de la micropipeta, como obtener líquido de un tubo a traves de la micropipeta, en tu video lo mostraste y me pareció interesante.

[@carlosreynoso9929]

0:42 ¿Qué revisar en los medios de cultivos antes de su preparación? 1:55 Realización de cálculos así como el registros de datos en la bitácora 3:09 Selección de recipientes adecuados para realización del medio de cultivo 3:33 Preparación del medio de cultivo 5:10 Errores que se cometen al pesar el medio de cultivo 5:26 continuación de la preparación del medio de cultivo 7:30 Medición de pH 8:20 ajuste de pH 9:10 Clasificación de medios de cultivo según su consistencia 10:18 Clarificación del medio de cultivo que se preparo 15:03 dispensación del agar en cajas Petri 15:52 solidificación de los medios de cultivo 17:12 adición de ingredientes antes del vaciado de medios de cultivos estériles 19:11 como dejar solidificar un medio de cultivo en un tubo de ensayo para la formación de bisel (en pico de flauta) 20:08 comentario y cierre

[@fabiantuquerrez5209]

Excelente explicación, muy buen tono al hablar más claro pa dónde!

[@ramirezmanzanooscarkevin5751]

Está bien explicado y muy entendible en general. Excelente video

[@targeliodositeolopezcontre5053]

Gracias por su información.

[@pazmaritzamonrealaraujo5153]

Súper detallado y buen explicado, me encanta.

[@migueth2787]

Gracias por sus videos profesor. Quisiera consultarle. ¿Al ajustar el pH de los medios, ya sea con ácido o hidróxido, estos requieren algún tratamiento en particular antes de ser añadidos a los medios? Por otro lado, ¿Cómo le hace para que los tubos durham le queden sin burbujas atrapadas? :'). Un abrazo maestro

[@ASTRIDLIZBETHALVAREZAVILA]

Preparación de medios de cultivo 1. Revisión de fecha de caducidad y consistencia 0:42 2. Revisión de instrucciones 1:48 3. Realización de cálculos y llenado de bitácora 1:55 4. Elección de recipientes 3:09 5. Medición de volumen de agua destilada 3:30 6. Pesaje de medio de cultivo 4:10 7. Disolución de medio de cultivo 5:25 8. Medición/ajuste de pH 7:19 9. Clarificación del medio de cultivo 9:49 10. Esterilización del medio 14:20 11. Dispensación del medio en su forma final 14:56 12. Solidificación del medio 15:49 13. Errores de llenado de cajas Petri 16:21 14. Casos particulares 17:07

[@josearriaga6814]

Excelente video, el único que he visto que en un 100% está correcto. Solo una observación para ahorrarnos tiempo; siempre teóricamente nos dicen que en un medio sólido o semi sólido, hay que clarificar el medio, la realidad y a mi experiencia, es que no es tan necesario, ya que al momento de esterilizarlo, este clarificara durante el proceso; al final entendí porque clarificas el medio xld.

[@vanessalizbethllamasgonzal8101]

LGVL-22B-D01 Súper bien explicado, gracias, profe.

[@francavalentinagarciapalac6959]

1) ¿Qué debemos checar al iniciar a preparar medios de cultivo? 0:40 2)¿Cuál es la presentación en la que vienen la mayoría de los medios de cultivo? 0:53 3) ¿Por que es importante revisar los medios? 1:00 4) ¿A qué se refiere con medio higroscópico? 1:27 5) ¿Cuáles son las condiciones de almacenamiento? 1:33 6) ¿Qué se registra en la bitácora de preparación? 1:52 7) ¿Qué balanzas se utilizan en el pesado de medio? 4:13 8) ¿Cómo podemos ajustar el pH de el medio? 8:20 9) ¿Cuál es la clasificación de los medios de cultivo según la consistencia? 9:10 10) ¿Cuáles son las condiciones para dispensar un medio de cultivo? 15:00 11) ¿Cuál es la importancia de dar vuelta las cajas dispensadas de agar? 16:04 12) ¿Cómo podemos adicionar ingredientes antes del vaciado? 17:12

[@roxanacalderon6310]

Excelente tus videos. A mi me pasa que cada vez que dispenso el agar XLD ó MRSV en as placas se me forma mucha agua en la tapa de la placa, he probado con varias temperaturas pero aun no lo logro que no se me condense agua. Saludos y gracias.

[@microcity873]

Fíjate que una cosa que yo he notado es que cuando tengo que vaciar múltiples cajas las dejo solidificar apiladas (como en torres de 10), tardan mas pero sólo se forma condensación en la caja de hasta arriba. En el resto no. Cuando guardo mis cajas en el refrigerador también a veces se les forma condensación. Cuando no es demasiada no es problema (porque acuérdate que las placas siempre de manipulan con la tapa hacia abajo entonces el agua nunca debería caer sobre el cultivo), igual checa mi video de "Técnicas básicas de inoculación" para que veas a lo que me refiero. Y por último otra cosa que a veces hago es que en cuanto llego al laboratorio meto las cajas sin inocular a alguna incubadora mientras limpio y acondiciono el área. Ya cuando voy a trabajar las saco y la poca condensación que se formó pues se elimina en la mayoría de los casos. Igual como ya seguro has notado mientras menos caliente esté el agar cuando vacías pues menos condensación se forma. Así que quizá combinando todos estos consejos prácticos se te facilite el trabajo un poco mas. Saludos

[@lysteriaoidar1289]

Esas tomas en cámara lenta se ven bien sexys xD. ❤️

[@marielperdomo5487]

Gracias

[@ramsesmesinoblanco8843]

RMB-22B-D03 Excelente explicación, profe, gracias!

[@nallelynoriega7957]

El color morado en los agares me da la vida entera. 💜 1-NMNJ

[@ruthvanessagonzalezlimon9857]

1-GLRV Muchas gracias profe, excelente video :3

[@Panda-dq3qd]

muy bn explicado, x casualidad no habrás hecho un video de como colocar las muestras ya sea de uñaa o piel en esas placas? Es que solo encuentro videos donde ya esta hecho pero no esta el procedimiento :(

[@microcity873]

Hola, no he hecho un video sobre eso pero es fácil. La técnica de llama “impronta” que quiere decir que sólo lo vas a apoyar y a retirar. Como si fuera un sellito. Entonces abres tu caja de Petri con agar, apoyas tu dedo o uña unos segundos y luego la retiras. Así ya introduces las cajas a la incubadora. Dos recomendaciones para esa práctica. La primera: Para hacer rendir tus cajas, puedes dividirla en dos o cuatro partes (por fuera, con un marcador) así en una caja puedes poner hasta 4 muestras. La segunda: También por fuera, con el marcador haz alguna seña para recordar donde tuvo contacto tu muestra (por ejemplos haz un óvalo donde tocó el dedo) porque a veces al abrir las cajas puede colarse algún microorganismo que este en el aire. Entonces así ubicamos fácilmente el sitio donde las colonias que crezcan serán atribuidas a la muestra. 😉

[@alejogalvan7032]

Muy buen video!!!

[@jesuspacheco1614]

woow!! buenardoo, gracias

[@fernandavazquez4134]

Fernanda Eunice Vázquez Garibay ¿ Que tanto afecta el hecho utilizar un medio de cultivo caducado? ¿ o puede ser que el crecimiento de los microorganismos no cambie mucho?

[@microcity873]

Pues depende de los ingredientes del medio y las condiciones de almacenamiento. Es decir, un medio caduco pero nunca abierto puede funcionar mejor que uno dentro de fecha de caducidad pero mal almacenado. Con todo y eso, no se recomienda el empleo de medios caducos y además recuerda incluir siempre controles positivos y negativos para garantizar la funcionalidad del medio

[@javiera8851]

Como de elaboran los cultivos mesofilos y termofilos?

[@victormanuelalvarezacosta4601]

¿Puede haber alguna afectación hacía los microorganismos si se utiliza un medio de cultivo que durante su preparación hirvió y se derramó? - Victor Manuel Alvarez Acosta

[@microcity873]

Que feo que se te anden proyectando los medios haha pero viéndolo friamente: a) Si el medio se esteriliza, entonces no. b) Si el medio NO se esteriliza, entonces si debido a que los ingredientes son sensibles al calor y si lo calentaste al punto de proyección entonces podría haber una afectación de los componentes.

[@danielajakelinelopezmora8996]

LMDJ-22B-D03 ¡Que buen vídeo, profe!⚡⚡⚡

[@ginacomparan5445]

Muy buen video profe me hubiera gustado saber esos pequeños tips cuando preparé mi primer medio de cultivo LMIA SS20B Diana Georgina Ramírez Comparán

[@alejandrotorres8586]

Hola, comentando de nuevo: ¿Cuánto tiempo dirías que se tarda en calentar en placa un litro de medio? pregunto porque ya conseguí que se quitaran los guantes de asbesto en mi universidad y se compraron otros, pero los estudiantes los usan directo en el fuego sin cuidado y los están quemando. Comenté que sería mejor calentar en placa de calentamiento como he visto en muchos vídeos en youtube, pero dicen que no, porque es muy tardado. ¡Muchas gracias de antemano!

[@microcity873]

Hola. Pues las parrillas de termo agitación tienen manera de regular la temperatura. Si lo pones fuerte pues es mas rápido.

[@nathaneljimnez1468]

Super¡ muy bien explicado

[@madridbasurto3058]

Donde conseguiste ese agar agar ?

[@ilianaayongaytan1790]

LMIA SS20B - Ayón Gaytán Iliana Es muy necesario realizarle el orificio al papel aluminio que funciona como tapa al clarificar, es decir, ¿no altera el medio? Recuerdo que mi maestra de Microbiología nos dijo que ese era un error que todos cometíamos y que sólo era cuestión de estar atentos. Pero ahora que veo el vídeo creo que era más bien por la técnica, los orificios que hacían era del tamaño de una pluma.

[@microcity873]

Varias consideraciones: 1. Colocar el aluminio perforado reduce la cantidad de agua que se pierde, la perforación permitirá la liberación de vapor y con ello reducirá la presión que podría facilitar que se proyecte una vez alcance el punto de ebullición. 2. No debes preocuparte por la contaminación debido a que el medio será esterilizado posteriormente y en caso de que no, al estar liberando vapor por el orificio el ingreso de polvo y microorganismos no es posible. 3. Compra papel aluminio de buena calidad asi garantizas la menor cantidad de residuos de aluminio desprendiéndose en tu medio de cultivo arrastrados por la condensación . 4. No reutilizar las cubiertas de aluminio entre distintos medios. 5. Si lo preparas en botellas con tapa plástica, garantiza que estén limpias y déjalas un poco flojas durante la clarificación para reducir el incremento interno en la presión.

[@josearriaga6814]

@@microcity873 Creo yo que no debemos fomentar el uso del aluminio como tapón, ya que con experiencia es muy práctico; pero para principiantes puede haber contaminación, además yo soy de la idea de enseñar de la forma "correcta", es decir sin los tips, ya que esos con la práctica los iras agarrando y creo es mejor enseñar con base en la norma, así si va y trabaja en otros lugares, podrá hacerlo de la manera que es y se evitará malos ratos. Hay que recordar que ese tip, lo puedes utilizar solo en medios que serán sólidos y que obviamente debes vaciar al instante; además todo medio debe ser incubado previo a su utilización para verificar la esterilidad, entonces un tapón de aluminio no servirá para un medio líquido.

[@microcity873]

Estamos hablando del tapón de papel aluminio durante la etapa de clarificación. Yo soy de la idea de enseñar con los tips porque se comparte la experiencia del profesor. De otro modo sólo los pongo a leer la norma o los libros y ya. A mí no me gusta que mi labor docente quede restringida a ser un “repetidor” de la información.

[@josearriaga6814]

@@microcity873 Creo yo que hasta cierta parte, la labor docente tambien debe estar basada en mostrar y ayudar a entender las normas, por algo están y para algo las crearon; eso se debe conocer: si o si, ya que en algún trabajo tendrás que demostrar que las conoces; los tips son eso, tips para ayudar a facilitar el trabajo o reducir tiempos, pero no remplazan el conocimiento oficial. Ahora bien, yo no conocía ese medio de cultivo, no sabía que no se puede esterilizar en autoclave, hasta ahorita que lo investigué y que la forma de "esterilizarlo" es clarificando. En mi experiencia, cuando llegué a clarificar medios, no le colocaba ningún tapón, al contrario solo apuntaba la boca del matraz hacia un espacio donde no hubiera personas por si se proyectaba y con cuidado lo clarificaba, nunca tuve problemas con eso, pero cada quien trabaja conforme su experiencia; yo por ejemplo, siempre clarifiqué medio, un día se me olvido y lo metí así al autoclave, al sacarlo el medio quedó perfecto, desde ese día nunca volví a clarificar

[@andresguerreroolmedo3383]

LMIA SS20B Andres Guerrero Olmedo ¿Como podemos reducir o evitar que el agua se condense en la caja petri?

[@microcity873]

Vaciando el medio atemperado (no tan caliente, a los 50 grados máximo), una vez que solidifica invierte las cajas (tapa hacia abajo) y úsalos lo antes posible

[@josearriaga6814]

Yo lo que hago es, vaciar el medio y dejar las cajas sin la tapa y esperar hasta la solidificación, esto solo puedes realizarlo en una campana de flujo laminar y mientras esperas a que solidifique poner luz UV.

[@angelicalizethperezmendoza5023]

PMAL-22B-D01 Excelente vídeo, profe, muy entendible. Graciassss c:

[@yonleidysmoreno4970]

Mil gracias 🤓

[@paolafrancoorozco1566]

Muy buen video profesor! FOPL-22B-D01

[@lsa1725]

El ph no habría que comprobar después de esterilizar?

[@microcity873]

Hola, no es del todo necesario pero no estaría mal. Puedes hacerlo con potenciómetro de superficie, para algunos medios como el Agar Papa Dextrosa acidificado si es una recomendación

[@itzelnetzeribautistabernal8046]

Cuando se requiere hacer un ajuste en el pH por ejemplo que requiera acidificarse y se nos pase un poco, es recomendable después agregar NaOH para volver a ajustar? Itzel Netzeri Bautista Bernal - LMIA SS20B

[@microcity873]

pues en principio si, pero me preocupa eso de “un poco”. La idea es ir acidificando con paciencia para no llegar a este escenario

[@susanasaraiariassanchez8262]

1-ASSS EXCELENTE VIDEO

[@nancyfernandafloresgonzale5823]

muy buenas técnicas! se entiende super bien :) LMIA SS20B nancy fernanda flores gonzalez

[@alejandrotorres8586]

¿De qué material son los guantes que utilizas en el minuto 10:10? en mi universidad usan guantes de asbesto, pero preferiría no utilizarlos dado los daños que ocasiona este material a la salud.

[@microcity873]

10686. GUANTES DE ALGODON P/ALTA TEMPERATURA, LARGO 33CM COLOR NARANJA - BEL-ART CTR scientific

[@alejandrotorres8586]

@@microcity873 Graciass

[@miguelangelsanchezpena3209]

SPMA - 22B - D01 Muy buen vídeo, gracias profe.

[@kerenmargaritarenteriahern3818]

RHKM-22B-D01 Excelente video saludos.

[@EmmitaGamerOficial]

😍

[@adrianvillar8070]

Genial, oye yo doy clases y comprar medio de cultivo es muy caro,¿ tu sabes como hacer medio de cultivo casero?

[@microcity873]

Hola. Si es para alguna práctica simple puedes hervir carne, colar el caldo y luego solidificarla si la pones a hervir con agar (que se vende en tiendas de ingredientes de alimentos). Así se hacían los medios de cultivo antes.

[@josearriaga6814]

Tambien es muy sencillo preparar el PDA, solo hierves trozos de papa en agua, el liquido resultante lo filtras con gasa y lo colocas en un recipiente, le adicionas 20 gr de dextrosa y 20 gr de agar, esterilizas y listo tienes medio PDA sólido para vaciar en cajas; si lo deseas líquido, solo no le agregas agar. Este medio es para cultivo de mohos y levaduras.

[@falconhtv329]

Temperatura de vaciado 45 grados no dijo

[@efrenisaiasqr7801]

[@diyconstruction7084]

Profesor dónde lo puedo contactar ,necesito un estudio gracias

[@microcity873]

[e-mail]

[@janethroblesnolazco2796]

Si yo quiero que un microorganismo esporule, como debo preparar su medio de cultivo? LMIA SS20B Robles Nolazco Janeth

[@josearriaga6814]

Según yo recuerdo la esporulación en bacterias se da en condiciones de estrés, entonces hay que crecerlo y esperar a que consuma el sustrato para que entre en estrés y produzca esporas; desconozco si existe una forma de alterar medios de cultivo y obligar al microorganismo a esporular, pero siendo lógico no creo ya que si no tiene condiciones optimas no se va a desarrollar y mucho menos producir esporas. Con mohos, debes conocer su ciclo de reproducción y esperar a que esporule.

[@kimberlygalilearamirezlope2976]

RLKG-22B-D03 Excelente video profe 👌🏻✨

[@javieralbertotorresruiz1069]

Ahora sí, estoy listo para preparar agar. p.d. No le vaya a caer agar caliente en la pierna 11:18 LMIA SS20B

[@griseldaledezmaflores3886]

LFG-22B-D03 Buen vídeo!

[@andresnoeltoribio6205]

1-TAN

[@karenyazmingomezo.7764]

1-GOKY

[@anapaulinadelatorreorozco6363]

APDLTO - 22B - D01 Gracias profe!

[@karlasofiarosasgarcia1590]

RGKS-22B-D01

[@paulinapalaciosortigoza8957]

1-POP

[@marianamejiagarcia4942]

1-MGM

[@rosaurajimenez1904]

Una pregunta profesor, si no tengo ese tipo de termómetro como puedo verificar la temperatura? Y la otra pregunta si puedo usar el erlenmeyer cubierto con papel aluminio para autoclavar?

[@microcity873]

Hola. Si introduces un termómetro al agar que ya está esterilizado ( o a aquellos que no se esterilizan) puedes contaminarlo con los microorganismos que el termómetro contiene. En esos casos es mejor tocar el frasco hasta sentirlo caliente pero sin quemar. Si haces esto recuerda agitar el frasco porque a veces está mas frío el agar próximo al vidrio del frasco que el agar al centro. Sobre lo otro, es posible esterilizar con cubiertas de papel aluminio sólo agares y caldos. Nunca material seco (como pipetas) porque el vapor no penetrará en ellos

[@lanarodriguez7846]

RLM-22B-D03 Gracias profe 😀

[@luzirenevelazqueziniguez2115]

1-VILI

[@jonathandavidespinozapina8391]

1-EPJD

[@brendakarinamartinezinigue5334]

MIBK-22B-D01

[@anaximandroherra981]

1-HCAA

[@lizbethgonzalezocegueda8882]

1-GOL

[@almacarolinaperezgutierrez2594]

1-PGAC

[@aracelimartinezchavez8658]

1-MCA

[@alejandraderanyrodriguezde1198]

1-RDAD

[@diamantecalderon3007]

Que eso jugar en casa

[@jorgearmandodominguezmejia4005]

DMJA-22B-D03, gracias.

[@alondralizethreyescastella6427]

RCAL-22B-D01

[@almaedithduenasolivas9052]

1-DOAE

[@armandogonzalezlemus1061]

GLA-22B-D01

[@nayelimartinezgarcia73]

1-MGNE

[@joseluisrodriguezcorona248]

1-RCJL Análisis Microbiológico 2021A

[@paulinaevarizespinoza905]

1- EEP

[@estefanialealcovarrubias6248]

LCE-22B-D01

[@elenadelgadovargas3344]

DVE-22B-D01 Gracias!!

[@beatrizesmeraldaramirezdia6739]

1-RDBE

[@ramondominguez6181]

DVRA-22B-D01

[@axelivangalindosalazar1078]

GSAI-22B-D03

[@mafertrujillo3631]

1-RTMF 2021A Análisis microbiologico

[@guadalupevillarruelrazo4108]

1-VRG

[@josealfredoayongonzalez1610]

AGJA-1

[@gerardomayorquin3404]

GMO-22B-D01

[@franciscodavilaaguilar3474]

DAF-22B-D03

[@alejandrobelechegranados2552]

LMIA SS20B Beleche Granados Alejandro

[@davidisaigarciaruiz1768]

GRDI-22B-D01

[@paolamartinezramirez3584]

PMR-22B-D01

[@dainelyelizabetharandaroma6671]

1-ARDE

[@anaberenicefloressantiago1918]

1-FSAB

[@saragabrielaulloaperez4324]

UPSG-22B-D01

[@zarehetsalascalvillo7649]

SCZ-22B-D01